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miRNA-375通过MYC/EMT对NSCLC细胞侵袭和迁移影响

分类:综合论文 时间: 热度:277

  [摘要] 目的 探究miRNA-375(miR-375)通過MYC/上皮间质转化(EMT)对非小细胞肺癌(NSCLC)侵袭和迁移的影响。

  方法 将未做任何处理的NSCLC细胞A549作为空白组,转染空载慢病毒的A549细胞作为对照组,转染表达miR-375慢病毒的A549细胞作为实验组。采用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)技术检测miR-375在NSCLC组织和癌旁组织中的表达量,以及miR-375在正常肺组织细胞(BEAS-2B细胞)和A549细胞中的表达量;通过Transwell实验检测3组细胞的侵袭、迁移能力;采用Western blot检测3组细胞中MYC蛋白和EMT相关蛋白(E-钙黏蛋白、波形蛋白)的表达量。

  结果 miR-375在NSCLC组织中的表达量显著高于癌旁组织(t=16.88,P<0.05),在A549细胞中的表达量显著高于BEAS-2B细胞(t=8.51,P<0.05)。过表达miR-375后,实验组与空白组和对照组相比,NSCLC细胞的侵袭(F=29.55,P<0.05)、迁移(F=90.21,P<0.05)能力增强,MYC蛋白表达增加(F=37.15,P<0.05),E-钙黏蛋白表达减少(F=47.25,P<0.05),波形蛋白表达增加(F=77.64,P<0.05)。

  结论 上调miR-375可以通过MYC/EMT影响NSCLC的侵袭和迁移能力。

  [关键词] 微RNAs;癌,非小细胞肺;基因,myc;上皮-间质转化;细胞运动

  肺癌是最常见的恶性肿瘤之一,同时也是全球恶性肿瘤死亡的主要原因[1-2],其中非小细胞肺癌(NSCLC)占所有肺癌的80%以上[3]。NSCLC目前的主要治疗方法是手术、放疗和化疗,尽管放疗和化疗的应用使NSCLC预后得到很大改善,但其生存率还是很低[4],所以NSCLC的靶向研究显得尤为重要。近年来研究结果发现,miRNA对肺癌的进展、诊断以及治疗起着关键作用,其在肺癌的治疗研究中备受关注[5]。miRNA是一类长约20个氨基酸的小RNA,它可以与特定的靶点结合,影响靶位点的mRNA翻译,进而影响相关蛋白的表达[6]。有研究表明,miRNA-375(miR-375)与肿瘤的侵袭、转移和凋亡有着密切的联系,而且miR-375的表达与癌症病人的总生存率相关,所以推测miR-375可能是一种有用的临床预后生物标志物[7-8]。JUNG等[9]研究发现,MYC可以受miR-375的调节进而影响肿瘤的进展和表型。MYC家族包括C-MYC、N-MYC和L-MYC,对肿瘤细胞的侵袭、迁移都有很重要的作用[10-11]。已有研究表明,一些药物可以通过抑制MYC通路的激活来抑制人宫颈癌细胞的增殖、迁移和上皮间质转化(EMT)[12];hsa-miR-24则可以通过调节c-MYC/EMT轴来抑制鼻咽癌细胞的转移能力[13];MYC还可以通过抑制RPS19/EMT信号传导的激活来抑制癌细胞的转移[14]。本研究旨在探讨miR-375是否可通过MYC/EMT对NSCLC的侵袭和迁移产生影响。

  1 材料与方法

  1.1 细胞与样本

  所用NSCLC细胞(A549)和正常肺组织细胞(BEAS-2B)由青岛大学博雅楼实验室冻存。A549细胞用RPMI-1640(HyClone,美国)培养液培养,BEAS-2B细胞用LHC-9(HyClone,美国)培养液培养,培养细胞时两种培养液都加入体积分数0.10胎牛血清(索莱宝,北京)。含EDTA的胰蛋白酶(索莱宝,北京)用于消化贴壁细胞。NSCLC组织和癌旁组织的新鲜样本各30例,来自青岛市市立医院。本研究的组织来源病人均签署了书面同意书,研究获青岛大学附属医院伦理委员会批准。

  1.2 细胞转染

  将A549细胞接种于96孔板中,每孔10 000个,置于含体积分数0.05 CO2的37 ℃培养箱中培养24 h。实验共分3组,在96孔板中未做任何处理的A549细胞作为空白组,将转染含空载体慢病毒(吉凯基因公司,上海)的A549细胞作为对照组,将转染表达miR-375慢病毒(吉凯基因公司,上海)的A549细胞作为实验组。将3组细胞置于培养箱继续培养10 h后,移除96孔板中的培养液,更换新的培养液,每孔100 μL。然后继续培养72 h,应用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)技术检测3组细胞中miR-375的表达量。

  1.3 qRT-PCR

  收集长势良好的细胞,按照iso plus RNA提取试剂盒(Takara,日本)的说明书提取3组细胞的总RNA,用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)(Takara,日本)将RNA反转成cDNA,使用SYBR Premix Ex Taq RR420A(Takara,日本)进行qRT-PCR,检测细胞中miR-375的表达。反应条件:95 ℃、30 s;95 ℃、5 s,60 ℃、30 s,40个循环;60 ℃、15 s。实验所用引物均购自上海生工,其中U6作为miRNA-375的内源性参照。引物序列见表1。

  1.4 Transwell小室实验

  ①迁移实验:向24孔板(康宁,美国)的3个孔中加入含体积分数0.15胎牛血清的培养液,每孔500 μL,将3个Transwell小室(康宁,美国)分别放入3个孔中。取3组细胞各5×104个分别接种于以上3个Transwell小室内,置于细胞培养箱中培养24 h后取出,用棉签擦拭3个Transwell小室的内膜,之后小室用甲醇溶液固定10 min,用甲紫染色10 min,PBS洗3次,拍照,在显微镜下计数细胞。②侵袭实验:将基质胶(康宁,美国)与完全培养液按1∶9的比例稀释,将稀释后的混合液按每孔100 μL加入Transwell小室中,置于37 ℃培养箱中4 h,其余实验步骤同迁移实验。

  1.5 Western blot檢测

  取3组细胞,用PBS洗2次后加入1 mL的PBS,使用细胞刮刀将细胞刮下分别放入3个离心管中,以5 000 r/min离心5 min。去上清留细胞沉淀,在细胞沉淀中加入细胞裂解液和蛋白酶抑制剂,冰上裂解30 min,以12 000 r/min离心10 min,上清即为总蛋白。将提取的蛋白质加入上样缓冲液SDS-Loading Buffer,沸水浴煮5 min。取45 μg蛋白置SDS-PAGE凝胶中电泳,电泳结束后将胶中的蛋白条带转移到PVDF膜上(Millipore,美国)。用脱脂奶粉封闭2 h,在4 ℃下与MYC(1∶1 000,CST)、β-actin(1∶3 000,Bioss)、E-钙黏蛋白(E-cadherin,1∶1 000,CST)、波形蛋白(Vimentin,1∶1 000,CST)的一抗一起孵育过夜;加入二抗(1∶1 000,Abcam)低速振荡60 min。用超敏型化学发光底物试剂(ECL)进行蛋白条带成像,分析条带灰度值,计算各蛋白相对表达量。

  1.6 统计学方法

  采用SPSS 19.0软件进行统计学分析,计量资料结果以±s形式表示,两组间比较采用配对t检验,多组间比较采用方差分析。以P<0.05表示差异有显著性。

  2 结 果

  2.1 miR-375的表达

  2.1.1 NSCLC组织和癌旁组织miR-375表达的比较 癌旁组织和NSCLC组织miR-375的相对表达量分别为0.40±0.20和1.00±0.03,NSCLC组织miR-375的表达明显高于癌旁组织,差异有显著性(t=16.88,P<0.05)。

  2.1.2 BEAS-2B细胞和A549细胞miR-375表达的比较 BEAS-2B细胞和A549细胞miR-375的相对表达量分别为1.00±0.02和2.20±0.30,A549细胞miR-375的表达明显高于BEAS-2B细胞,差异有统计学意义(t=8.51,P<0.05)。

  2.1.3 各组细胞miR-375表达的比较 实验组细胞miR-375的表达较空白组和对照组明显增加,差异有显著性(F=1 677.95,P<0.05),而空白组和对照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。见表2。

  2.2 miR-375对细胞侵袭和迁移能力的影响

  与空白组和对照组相比,实验组细胞的迁移、侵袭能力均增强,差异有显著意义(F=90.21、29.55,P<0.05),而空白组和对照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。见表2。

  2.3 miR-375对MYC蛋白表达的影响

  与空白组和对照组相比,实验组细胞MYC的表达增加,差异有显著意义(F=37.15,P<0.05),而空白组和对照组比较差异无统计学意义(P>0.05)。见表3。

  2.4 miR-375对EMT相关蛋白表达的影响

  与空白组和对照组相比,实验组细胞E-cadhe-

  rin的表达降低,Vimentin的表达升高,差异均有显著性(F=47.25、77.64,P<0.05),而空白组和对照组E-cadherin和Vimentin的表达比较差异无统计学意义(P>0.05)。见图1和表3。

  3 讨 论

  肺癌是全球范围内很常见的一种肿瘤,NSCLC在所有肺癌类型中发病率最高[15]。NSCLC确诊时多数已发生侵袭转移,这是其死亡率高的主要原因,所以研究影响NSCLC侵袭和转移的靶点显得尤为重要。miRNAs是小分子内源性非编码RNA,可以影响基因表达的转录后调控,从而起到肿瘤抑制基因或致癌基因的作用[16-17]。已有大量的证据表明,miRNAs对NSCLC的进展有影响[18-19]。在众多的miRNAs中,越来越多的研究集中在miR-375上,miR-375与癌症总体生存率显著相关,并且对多种癌症的侵袭、转移、生长和分化产生作用[8,20]。但miR-375在NSCLC中的研究较少,它对NSCLC的影响还不甚明确,所以本研究选择了miR-375作为NSCLC的研究靶点。

  本研究结果显示,miR-375在NSCLC组织中呈高表达,与相关研究结果一致[21],推测miR-375在NSCLC中起促癌基因的作用。进一步的实验结果显示,过表达miR-375后细胞的侵袭和迁移能力增强,表明miR-375可以调节NSCLC的侵袭迁移能力,并且是起促癌基因的作用。但是也有研究结果显示,miR-375在肺癌、食管癌、肝细胞癌中呈低表达[22-24]。目前miR-375在癌症中具体的作用还不确定,其是否能作为癌症治疗的靶点还有待进一步证实。目前,综合本实验结果和相关文献可以看出,miR-375既可以为癌基因,也可以为抑癌基因,

  它在不同肿瘤中的作用不同。MYC癌蛋白为“超级转录因子”,可以调控基因组15%左右的转录,其下游效应子可以参与核糖体生物合成、蛋白质翻译、协调细胞增殖和分化等生物功能[25-26]。本文实验结果显示,过表达miR-375后NSCLC细胞MYC蛋白的表达水平升高,表明miR-375可以通过调节MYC的表达来影响NSCLC的侵袭和迁移。EMT是一个动态变化的过程,在该过程中稳定的上皮细胞转化为不稳定的、具有转移和侵袭能力的间质细胞,故EMT在肿瘤的发生发展中扮演着不可或缺的角色[27-28]。MYC也可以通过调节EMT的发生发展来影响肿瘤进展[29]。本实验结果表明,随着miR-375的过表达,NSCLC细胞的MYC表达显著增加,侵袭和迁移能力显著增强,EMT相关蛋白的表达也发生明显变化,提示miR-375可以通过MYC/EMT影响NSCLC细胞的侵袭和迁移能力。

  [參考文献]

  [1]SIEGEL R L, MILLER K D, JEMAL A. Cancer statistics, 2017[J]. CA-A Cancer Journal for Clinicians, 2017,67(1):7-30.

  [2]FELIP E, GARRIDO P, TRIGO J M, et al. SEOM guidelines for the management of non-small-cell lung cancer (NSCLC)[J]. Clinical & Translational Oncology, 2009,11(5):284-289.

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